胚胎体外培养（In Vitro Culture, IVC）是胚胎工程领域的核心技术环节，培养液作为胚胎体外生长的核心微环境，其成分组成直接决定胚胎发育潜能及后续实验的可靠性。本文将从培养液的核心成分、性能特征及适用场景等方面对CZB、KSOM与M16三款经典胚胎培养液进行系统比对，为胚胎培养相关实验的培养液选择提供科学依据。

核心成分解析与量化对比（单位：mM）

共性特征分析：三款培养液的核心优势

缓冲系统：三款培养液均含25 mM左右的NaHCO₃，该成分可与培养环境中的CO₂形成稳定缓冲对，确保培养液pH值维持在胚胎发育适宜的7.2-7.4范围，为胚胎提供CO₂缓冲系统。

能量底物：均同时提供丙酮酸和乳酸两种能量物质，支持胚胎从氧化磷酸化到糖酵解的代谢模式转换，满足不同发育阶段的能量需求。

基础离子：均包含Na⁺、K⁺、Ca²⁺、Mg²⁺等基础离子，通过离子平衡调节渗透压，保障细胞信号传导的正常进行。

不同培养液适用场景

KSOM —— 极低葡萄糖（0.20 mM）+氨基酸支持的黄金组合，适合小鼠合子至囊胚全程培养；低渗透压（~256 mOsm），更接近输卵管液环境。

CZB —— 高乳酸钠（28 mM），其能量底物组合偏向于支持糖酵解，支持从受精卵到桑葚胚的早期发育。

M16 —— 高葡萄糖（5.55 mM）+高丙酮酸（0.33 mM），氧化磷酸化支持型，更有利于能量需求巨大的囊胚形成和扩张，但需注意早期代谢压力。

表2 不同培养液中C57BL/6J小鼠胚胎发育率的比较^[1]

培养液的保存

胚胎培养液未开封可保存3个月（按说明书条件保存）；开封后需要在2周内使用。使用污染或成分变化的培养液可能导致胚胎分裂迟缓、碎片增多、囊胚形成率下降等胚胎发育异常，甚至引发实验室交叉污染，影响实验的正常进行。

超期的风险

• pH失衡：胚胎培养液通常需维持特定pH（7.2-7.4）和渗透压。开封后，CO₂逸出可能导致pH升高（偏碱性），破坏胚胎生长的酸碱平衡；

• 氧化损伤：某些成分（如氨基酸）接触空气后可能氧化失效，或产生自由基，损害胚胎细胞；

• 营养断供：丙酮酸、乳酸等小分子物质可能因挥发导致浓度下降，生长因子如BSA可能因温度波动而变性；

• 渗透压紊乱：水分蒸发导致培养液渗透压升高，影响胚胎存活。

• 无菌环境被破坏：即使操作规范，多次开盖、吸液等操作仍可能引入环境中的微生物。

培养液保存tips:

1. 标记开封日期：严格记录开封时间，超期后废弃。

2. 避免温度波动：开封后存放于稳定环境（如培养液专用冰箱）。

相关产品

产品名称	货号	备注
KSOM培养液	M1435	添加氨基酸，高质量囊胚培养优选
KSOM培养液（无EAA、NEAA）	M1436	常规培养，稳定突破早期发育阻滞
CZB培养液	M1655	专为克服小鼠胚胎体外培养中2-cell阻滞而设计
CZB-Hepes培养液	M2750	HEPES缓冲体系，提供稳定的非CO₂依赖环境
M16培养液	M1735	高葡萄糖含量，支持后期囊胚腔快速形成

参考文献

[1]贾青, 高娟, 杨博，等人. 小鼠体外受精及其胚胎体外培养的比较研究 [J] 实验动物与比较医学. Oct．2008．28(5).

在哺乳动物胚胎体外培养的历程中，培养基的组成是决定发育成败的关键。从克服“二细胞阻滞”到支持高质量囊胚形成，KSOM（Potassium Simplex Optimized Medium） 家族的演进代表了该领域的重大突破。

一、 破局之初：KSOM的诞生与核心优势

在KSOM问世之前，小鼠胚胎体外培养常受困于“二细胞阻滞”，早期培养基（如M16）较高的钠离子和葡萄糖浓度可能对胚胎造成代谢压力。KSOM的诞生源于“单纯形优化（Simplex Optimization）”策略。J. David Biggers ^[1]让胚胎自身筛选最适配方，成功开发出SOM培养基。随后，基于对胚胎细胞内离子浓度的测量，团队在SOM中增加了钾离子（K⁺, 2.5 mM）和钠离子（Na⁺, 95 mM）的浓度，形成KSOM培养基。

图1. 哈佛医学、牙科和公共卫生学院出版的《焦点》杂志上题为“受精卵的饮食“的采访，文章发表于1994年4月15日，描述了约翰在单纯形优化方面的工作^[2]。

与传统培养基相比，KSOM的核心优势在于其“低钠高钾”的生理化离子组成。这种配方能更好地维持细胞内钠钾平衡，促进蛋白质合成与RNA稳定性，从而有效克服二细胞阻滞，显著提高从受精卵到囊胚的发育率。它标志着第一个真正为小鼠早期胚胎“量身定制”的化学成分明确培养基的诞生。

二、 质的飞跃：KSOM/AA的诞生与全面超越

尽管KSOM已表现出色，但科学家发现，囊胚形成伴随的蛋白质合成爆发和囊胚腔流体转运，亟需氨基酸的支持。1995年，Ho, Yugong等人^[3]的研究证实，在KSOM基础上添加必需与非必需氨基酸（形成KSOM/AA），带来了全方位的提升。

与KSOM（无AA）相比，KSOM/AA的优越性体现在多个维度：

在发育形态上，KSOM/AA不仅继承了基础款支持良好囊胚发育的能力，更显著提升了囊胚的形成速率与孵化比例，这表明氨基酸为胚胎在关键发育节点提供了额外动力，并增强了其着床潜力。

图2. KSOM或KSOM/AA中胚胎的发育率^[3]。

在细胞水平上，最直观的进步体现在囊胚总细胞数的显著增加。这意味着在KSOM/AA中形成的胚胎具备更强的增殖能力和发育潜能。

图3. 在KSOM或KSOM/AA中发育后每个囊胚的细胞总数^[3]。

在分子层面，KSOM/AA带来了更深层次的优化。通过逆转录PCR分析发现，在其中发育的胚胎，其多个关键基因（如代谢、转录调控、生长因子等相关mRNA）的表达水平与体内发育的胚胎无显著差异。这表明，氨基酸的加入不仅提供了营养，更从根源上支持了胚胎建立更接近自然的基因调控网络。

图4. 在KSOM/AA或Whitten培养基中发育的胚胎中特异性mRNA的相对丰度与体内发育的胚胎中的丰度的比较。黑色：KSOM/AA；白色：Whitten培养基^[3]。

综上所述，KSOM/AA实现了从支持胚胎“存活”到保障胚胎“高质量”发育的质的飞跃，从而奠定了其作为小鼠胚胎培养“黄金标准” 的地位。

三、 持续演进：KSOM家族的优化与启示

KSOM的成功并非终点。为了满足不同需求，其家族不断衍生优化：

· mKSOM（modified KSOM ）：mKSOM-R ^[4]。

· 稳定性优化：采用甘氨酰-L-谷氨酰胺二肽替代不稳定的L-谷氨酰胺，减少氨毒性，进一步提高内细胞团（ICM）比例和胚胎质量^[1]。

此外，基于KSOM/AA的研究挑战了传统培养理念。大量证据表明，使用KSOM/AA进行的单步培养，效果不逊于甚至优于需要更换液体的两步序贯培养，这为简化人类辅助生殖技术操作流程提供了科学依据。

四、 总结：从KSOM到KSOM/AA，是胚胎培养理念的升级

KSOM家族的演进，体现了从“支持胚胎存活”到“保障胚胎高质量发育”的深刻转变。

· KSOM 的核心贡献在于通过生理化离子组成，为胚胎早期发育扫清了障碍（二细胞阻滞），奠定了坚实的基础。

· KSOM/AA 则在KSOM的基础上，通过精准的营养支持（氨基酸），实现了对胚胎发育速度、细胞数量、基因表达及后续潜能的全面优化。

因此，KSOM/AA不仅继承了KSOM的基石优势，更通过氨基酸的协同作用，实现了胚胎体外培养效果的终极目标——更接近体内发育状态。如今，它不仅是实验室研究小鼠胚胎的利器，其设计哲学与成功经验，也为人类辅助生殖技术的培养基优化提供了宝贵的参考。

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关键词：KSOM、KSOM/AA、胚胎培养、氨基酸、囊胚、基因表达

相关产品

KSOM培养液 （M1435）：适用于受精卵发育至囊胚阶段，无需中途换液。

KSOM培养液（无氨基酸版）（M1436）：无AA 配方降低代谢废物堆积，克服小鼠2-cell阻滞。

参考文献

1. [1] Lawitts JA, Biggers JD. Optimization of mouse embryo culture media using simplex methods. J Reprod Fertil. 1991 Mar;91(2):543-56. doi: 10.1530/jrf.0.0910543. PMID: 2013878.
2. [2] Summers MC. A brief history of the development of the KSOM family of media. Hum Fertil (Camb). 2014 Jun;17 Suppl 1:12-6. doi: 10.3109/14647273.2014.919185. PMID: 24939347.
3. [3] Ho Y, Wigglesworth K, Eppig JJ, Schultz RM. Preimplantation development of mouse embryos in KSOM: augmentation by amino acids and analysis of gene expression. Mol Reprod Dev. 1995 Jun;41(2):232-8. doi: 10.1002/mrd.1080410214. PMID: 7654376.
4. [4]Men H, Amos-Landgraf JM, Bryda EC, Franklin CL. KSOM-R supports both mouse and rat preimplantation embryo development in vitro. Theriogenology. 2023 Mar 1;198:69-74. doi: 10.1016/j.theriogenology.2022.12.024. Epub 2022 Dec 17. PMID: 36563630; PMCID: PMC9870949.

在辅助生殖技术（ART）的发展历程中，科学家们始终面临一个难题：如何在体外准确重现生物体内的受精环境。自然受孕时，精子与卵子的相遇如同一场精心安排的 “约会”，发生在输卵管这个兼具舒适与安全的 “五星级酒店”；而实验室里的胚胎培养皿，在早期却只能算作条件简陋的 “招待所”。这两者之间的环境差距悬殊。 

为了打破这一困境，科学家们开启了 “逆向工程” 的探索之路 —— 通过深入分析输卵管液与精液的成分，试图在小小的培养皿中，人工打造出与生物体生理环境高度相似的 “孕育温床”。而 HTF（Human Tubal Fluid，人输卵管液）和 TYH（Toyoda-Yokoyama-Hoshi）培养基，正是在这样的背景下应运而生，成为辅助生殖技术发展史上的关键里程碑。 

一、HTF 培养液：破解早期胚胎的 “生存危机” 

在试管婴儿（IVF）技术刚刚起步的阶段，胚胎在体外培养的过程中，始终面临着严峻的 “生存危机”—— 存活率非常低。科学家们经过反复研究发现，当时常用的普通培养液（如 DMEM、RPMI），无法满足早期胚胎的生长需求：胚胎细胞要么在培养过程中逐渐死亡，要么出现发育异常的情况，这成为制约试管婴儿技术发展的重要瓶颈。 

事实上，输卵管液才是早期胚胎生长的 “黄金标准”，它蕴含着胚胎发育所需的各种营养物质。但问题是，不可能每次实验都从生物体中抽取输卵管液，这种方式既不现实，也存在伦理与操作上的诸多难题。 

1985 年，Quinn 团队^[1]取得了突破性进展。他们首次对人类输卵管液的成分进行了系统且全面的分析，揭开了这份 “生命营养液” 的神秘面纱：其中不仅含有特定浓度的离子（如 Na⁺、K⁺、Ca²⁺），还包含乳酸、丙酮酸等关键能量底物 —— 要知道，早期胚胎的能量供给主要依赖这些物质，而非人们通常以为的葡萄糖；此外，氨基酸和蛋白质也在其中扮演着重要角色。 

基于这些发现，Quinn 团队成功研发出了 HTF 培养基。这款培养基完全复刻了输卵管液的核心成分，让胚胎在体外培养皿中，也能像在母体输卵管里一样，获得充足的营养与适宜的环境。直至今日，HTF 培养基依然是IVF的基础培养基之一，后续出现的各类商业化培养基（如Vitrolife G-1/G-2系列），几乎都是在 HTF 的基础上改良而来。 

二、TYH 培养基：唤醒精子的 “获能密码” 

二十世纪中叶，生殖领域的科学家们发现了一个有趣却关键的现象：刚射出的精子其实不具备受精能力，它们必须在雌性生殖道内经历一个特殊的 “修炼” 过程 ——获能（Capacitation），才能获得穿透卵子的 “本领”。 

然而，在当时的实验条件下，早期使用的培养基（如 Krebs-Ringer 液）无法模拟 “获能” 过程的环境条件。这导致精子在体外培养时，就像离开水的鱼一般，毫无生机，更别提完成受精任务了。 

1971 年，日本科学家 Toyoda 与 Yokoyama 在针对小鼠受精的研究中^[2]，迎来了关键性的突破。他们发现，牛血清白蛋白（BSA）能够模拟雌性生殖道的环境，有效诱导精子完成 “获能”；特定的离子组合（如 Ca²⁺、HCO₃⁻）对精子超激活运动（Hyperactivation）至关重要。基于这些发现，他们成功研发出了TY 培养基（Toyoda-Yokoyama Medium），首次在体外环境中实现了小鼠精子的 “获能” 与受精。 

后来，研究者 Hoshi在 TY 培养基的基础上，进一步调整其成分，最终形成了如今广为人知的 TYH 培养基，成为小鼠IVF培养基界的 “黄金标准”。它不仅首次在体外成功复现了精子 “获能” 的关键环境，成为小鼠生殖研究领域不可或缺的 “标配” 培养基；也为人类IVF技术的发展奠定了基础。 

科学：一场 “人工复刻” 自然的精妙艺术 

从本质上来说，科学研究中的许多突破，都是一场 “人工复刻” 自然现象的精妙艺术。 

• HTF 培养基是科学家们用智慧创作的 “人工输卵管液”—— 它精准还原了输卵管的核心环境，为精卵结合创造了理想的平台； 

• TYH 培养基是科学家精心 “复现” 的雌鼠生殖道环境 —— 它成功唤醒了精子的 “活力密码”，让精子在体外环境下活力满满，顺利完成 “获能”。 

HTF 与 TYH 这两种培养基的诞生，直接推动了现代辅助生殖技术的跨越式发展。它们让人类得以在实验室的可控条件下，精准调控精子与卵子的结合过程。 

参考文献

[1] Quinn P, Kerin JF, Warnes GM. Improved pregnancy rate in human in vitro fertilization with the use of a medium based on the composition of human tubal fluid. Fertil Steril. 1985 Oct;44(4):493-8. doi: 10.1016/s0015-0282(16)48918-1. PMID: 3902512. 

[2] Yutaka Toyoda1 and Minesuke Yokoyama. The early history of the TYH medium for in vitro fertilization of mouse ova. J. Mamm. Ova Res. Vol. 33 (1), 3–10, 2016

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HTF培养液 （M1135）：无菌即用型小鼠IVF受精液，高钙配方，受精率>85% 

TYH精子获能液 （M2035）：含肝素，精子获能后受精率>85%

TYH精子获能液（环糊精版）（M2036）：含环糊精（MBCD），适用于冷冻精子的获能培养液。

在辅助生殖与发育生物学研究中，超数排卵（superovulation）是获取高质量卵母细胞的关键技术。小鼠超数排卵推荐每只雌鼠注射PMSG 5-10 IU，48 h后注射HCG 5-10 IU，在注射HCG后14-16 h进行受精^[1]。然而，PMSG与HCG的“48小时定律”背后，隐藏着卵泡同步化与卵母细胞成熟的精密时钟。

为什么进行促排？

小鼠自然发情仅释放10–15枚卵子。通过外源激素干预，可突破这一限制：首先PMSG（孕马血清促性腺激素）模拟FSH效应，同步募集并激活大量原始卵泡，使其发育至有腔阶段，此时的卵母细胞仍停滞于第一次减数分裂双线期（GV期）；间隔48 h后给予HCG（人绒毛膜促性腺激素），模拟LH峰，诱导GV期卵母细胞恢复减数分裂，排出第一极体并停滞于第二次减数分裂中期（MII）。最终，在输卵管壶腹部聚集大量同质化的MII期卵子，为体外受精和后续胚胎操作提供充足且高质量的材料。

为什么间隔48小时？

PMSG通过模拟FSH，需44-48小时募集足够数量的小卵泡并使其同步发育至排卵前阶段。George^[2]研究发现，将PMSG-HCG间隔从48小时延长至60小时，并未提升小鼠见栓率与受精率（Table 1.）；与此同时，延长注射时间也未能协助胚胎克服2-细胞阻滞（Table 2.）。这一结果提示，48小时可能是卵泡群同步化与卵母细胞核成熟的“黄金窗口”。

HCG后14-16小时：MII期的“保鲜期”

注射HCG模拟LH峰后，卵母细胞恢复减数分裂，经历生发泡破裂（GVBD），最终在12-14小时内完成第一次减数分裂并排出第一极体，达到MII，此时方具备受精能力（Figure 1.）。取卵时机必须精准契合此成熟窗口：过早取卵（如HCG后<12小时）可能获得大量停滞在GV期或MI期的未成熟卵母细胞，无法受精；而过晚取卵（如HCG后>16小时），卵母细胞则开始进入老化阶段，表现为皮质颗粒提前释放、纺锤体结构异常等，从而导致受精率下降或胚胎发育潜能受损。因此，HCG后14-16小时是获取成熟MII期卵母细胞并进行受精的理想时间窗。

技术细节：

• 激素保存：PMSG与HCG均为糖蛋白，反复冻融会导致空间结构变性。建议单次分装-20℃保存，避免活性损失。

• 取卵时机：HCG注射后14-16小时后取卵，可最大化获取输卵管壶腹部成熟卵母细胞。

研究启示

George等的数据警示我们：在超数排卵方案中，时间间隔并非“越长越好”。延长激素间隔可能扰乱卵泡微环境，最终损害胚胎基因组激活。未来需结合单卵母细胞转录组与实时成像技术，解析48小时定律的分子计时器。48小时，是进化赋予小鼠的生殖节拍器；14-16小时，是卵母细胞等待精子的终极倒计时。精准把握每一小时，才能让每一次超排成为“质量”而非“数量”的胜利。

参考文献

1. [1] Behringer R, Gertsenstein M, Nagy KV, Nagy A. Administration of Gonadotropins for Superovulation in Mice. Cold Spring Harb Protoc. 2018 Jan 2;2018(1). doi: 10.1101/pdb.prot 092403. PMID: 29295897.
2. [2] George MA. An analysis of the effect of the PMSG-HCG interval on the two-cell block. Hum Reprod. 1988 Feb; 3(2):249-50. doi: 10.1093/oxfordjournals.humrep.a136687. PMID: 3356781.
3. [3] Sun, Hongzheng et al. "The global phosphorylation landscape of mouse oocytes during meiotic maturation." The EMBO journal vol. 43, 20 (2024): 4752-4785. doi:10.1038/s44318-024-00222-1.

促排卵试剂盒系列

产品名称	货号
即用型促排卵试剂盒H	M2520
即用型促排卵试剂盒P	M2620
粉末型促排卵试剂盒H	M2530
粉末型促排卵试剂盒P	M2630

        在动物实验研究中，不少科研人员曾遭遇 “麻醉过浅导致小鼠挣扎”、“麻醉过深引发死亡”、“恢复期过长影响观察” 等问题。小鼠麻醉剂的合理选择，直接关系到实验安全性、数据准确性与动物福利。

        针对动物实验中最常用的四种麻醉剂 —— 三溴乙醇、异氟烷、水合氯醛、戊巴比妥钠，本文从给药方式、时间特性、优缺点及适用场景等维度进行特性对比，为您的实验顺利开展提供科学方案。

特性	三溴乙醇	异氟烷	水合氯醛	戊巴比妥钠
给药方式	腹腔注射	吸入	腹腔注射	腹腔/静脉注射
起效时间	1-3分钟	30-60秒	5-15分钟	3-5分钟
麻醉时长	15-45分钟	可调	30-60分钟	45-90分钟
恢复时间	1-2小时	5-10分钟	2-4小时	4-8小时
优点	麻醉平稳，对心肺影响小，恢复快	可控性强，代谢快	便宜、对心血管影响小	麻醉深且稳定
缺点	1. 易分解，需避光保存 2. 不同品系小鼠对剂量的反应差异较大	1. 需要气体麻醉设备 2. 操作者暴露风险	1. 麻醉不稳定 2. 腹膜刺激大	呼吸抑制强，易致死
适用场景	短-中时长手术	需精确控制的手术	预算有限的短时麻醉	终末实验（不打算让鼠醒）

三溴乙醇核心优势

麻醉深度可控，降低操作风险

• 异氟烷虽起效快，但需专业气体麻醉设备，操作不当可能导致人员暴露；

• 水合氯醛麻醉效果不稳定，易出现 “麻不倒” 或 “醒不来” 的情况；

• 戊巴比妥钠呼吸抑制作用强，更适用于终末实验；

• 三溴乙醇专为啮齿动物设计，通过腹腔注射即可实现稳定麻醉，无需担心深度失控。

对小鼠生理影响小

部分麻醉剂（如戊巴比妥钠）会强烈抑制小鼠呼吸与心跳，导致生理指标偏差。三溴乙醇对心血管系统影响轻微，能维持小鼠稳定的生理状态，尤其适合需监测精准生理数据的实验。

恢复期时间长度适中

若小鼠苏醒后仍处于意识模糊状态，会干扰后续生理指标监测与实验结果判断。三溴乙醇恢复期仅1 - 2小时，小鼠可快速恢复正常状态，不影响后续实验观察。

高性价比

即用型三溴乙醇溶液无需额外投入麻醉设备，开盖即可使用，大幅节省实验经费。

三溴乙醇使用要点

1. 严格把控新鲜度，现配现用

三溴乙醇易分解失效，建议现配现用。以爱贝生物即用型三溴乙醇溶液（货号：M2910）为例，未拆封试剂可保存 6 个月，开封后 建议室温避光保存或4-8℃冷藏避光保存，且使用周期不超过２周。特别提醒：冷藏保存温度不得低于4℃，且使用前需对光检查是否产生结晶，以免影响试剂效果。本试剂严禁冷冻。

2. 精准控制剂量，提前设计预实验

常规推荐剂量为 125-250 mg/kg（腹腔注射），但不同品系小鼠对药物敏感度存在差异，正式实验前需进行预实验，确定合适的剂量。

3. 麻醉后做好保温，避免体温过低

小鼠麻醉后体温易下降，可能引发心率失常、血压骤降甚至死亡。需使用加热垫、红外灯或专用保温设备维持体温。爱贝生物专为小鼠实验设计的小动物金属保温热台（货号：ABHOT04），配备数字化温度设定模块与专用温度传感器，可提供稳定温度控制；同时搭配专用围栏，能防止小鼠苏醒后爬出跌落。

4. 实时监测麻醉深度，避免中途苏醒

麻醉深度过浅：无法维持稳定麻醉状态，小鼠中途苏醒挣扎，可能直接导致实验失败；

麻醉深度过深：显著提升副作用发生率与死亡率，严重影响实验数据有效性。

两种判断麻醉深度的方法：

① 捏脚趾法：轻掐小鼠后脚趾，无反应则说明麻醉深度合适；

② 角膜反射法：用棉签轻触小鼠眼角，无眨眼动作即表示麻醉状态达标。

        选用合适的小鼠麻醉剂，是保障实验成功的关键一步。若您需要更详尽的实验技术信息，欢迎随时联系我们，获取专业支持！

胚胎培养技术，是体外受精实验成功的核心环节。HTF培养液与TYH精子获能液，如同为胚胎发育量身定制的 “生命鸡尾酒”—— 前者护航胚胎培育，后者助力精子激活，各有不可替代的作用。本文将详细介绍这两款培养液的科学配方与应用要点。

首先，将HTF与TYH的关键成分进行对比，直观感受”生命鸡尾酒“调配的艺术：

HTF培养液（货号：M1135）如同为胚胎打造的 “专属月子餐”，注重营养均衡与环境稳定。

TYH精子获能液（货号：M2035）则是为精子定制的 “能量补给站”，聚焦活力激活与能量供应。

错用培养液的风险

错用HTF培养精子会出现精子活力显著下降、甚至 “停滞不动” 的情况。核心原因在于：一方面，HTF缺乏肝素这一 “精子兴奋剂”，无法促进精子获能；另一方面，其葡萄糖浓度仅为TYH的一半，难以满足精子高能量消耗需求，如同让运动员 “空腹参赛”，无法发挥正常活性。

错用TYH培育胚胎会导致胚胎发育停滞、甚至凋亡。主要原因是：TYH不含胚胎所需的 “能量物质” 乳酸钠，相当于切断胚胎的 “营养供给”；同时，其高盐环境如同让婴儿饮用海水，远超胚胎耐受范围，破坏胚胎发育微环境。

总结

HTF培养液的优势

适宜的钙离子浓度：如同卵子激活的 “钥匙”，为胚胎受精及后续分裂提供适宜的离子环境，保障胚胎正常发育节奏。

乳酸钠：堪称胚胎的 “液态黄金”，是早期胚胎的能量来源，直接决定胚胎存活与发育效率。

TYH培养液的亮点

高糖高盐配方：相当于精子的 “加速能量泵”，高葡萄糖满足精子运动的高能量需求，高盐环境则维持精子活性稳定。

肝素：作为精子的 “活力补给站”，可快速激活精子活力，促进精子获能，是精子具备受精能力的关键因素。

两款培养液的共性特点

HTF与TYH培养液均添加牛血清白蛋白（BSA），如同为细胞提供 “蛋白质奶盖”，起到保护细胞、维持渗透压稳定的作用。

科普环节

• TYH为何添加酚红

  酚红并非为了提升外观颜值，而是作为重要的 pH 指示剂。精子在代谢过程中会持续产生酸性物质，当培养基 pH 值下降到一定程度时，酚红会使培养基颜色由红变黄，此时需及时更换培养液，避免酸性环境影响精子活力。

• 乳酸钠在HTF中的重要性

  早期胚胎无法直接利用葡萄糖，如同“无法消化主食的婴儿”。乳酸钠如同“初乳”，是早期胚胎仅有的能量来源。直到胚胎发育至 8-cell期后，才算完成 “断奶”，具备利用葡萄糖的能力。

●在倒置显微镜下对整个卵巢连续切片中的各级卵泡进行计数。各级卵泡分类见下图，为了避免重复计数同一卵泡，只计数可见卵母细胞核的卵泡。